Россия
ФГБНУ Федеральный научный центр овощеводства (старший научный сотрудник)
Россия
Россия
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр кормопроизводства и агроэкологии имени В.Р. Вильямса» (старший научный сотрудник)
Россия
УДК 631.527 Селекция растений
Представлена морфобиологическая и хозяйственно ценная характеристика перспективного сорта ярового рапса Светозар. Сорт создан с использованием химического мутагенеза: в результате обработки семян сорта Викрос этилметансульфонатом в концентрации 0,03% с последующим отбором линий, отличающихся скороспелостью, устойчивостью к полеганию, улучшенным биохимическим составом семян. Отличительные морфологические признаки: укороченные междоузлия главного стебля, побеги первого порядка базальные, располагаются сближено друг к другу «мутовкой», что повышает устойчивость растений к полеганию; одновременное цветение побегов первого порядка и центральной кисти, за счет чего созревание семян на растении ускоряется и происходит дружно на всех ярусах; сурепичный тип расположения стручков, что повышает устойчивость растений к осыпанию семян при перестое на корню и неблагоприятных погодных условиях во время уборки. Средняя урожайность семян за пять лет испытаний составила 2,37 т/га, что на 0,39 т/га выше стандарта сорта Викрос. Содержание жира — 45,4 ± 2,1%, белка — 24,2 ± 2,0%, клетчатки — 8,4 ± 2,9%. Гарантирует получение 28–32 т/га зеленой массы с выходом до 6 т/га сухого вещества. Низкое содержание глюкозинолатов в семенах (11,6–13,9 мкмоль/г) позволит использовать семена, жмых и шрот при кормлении животных в повышенных дозах. С 2023 г. сорт допущен к использованию по пяти регионам России — Северо-Западному, Центральному, Волго-Вятскому, Уральскому и Западно-Сибирскому.
рапс яровой, химический мутагенез, урожайность семян, сорт, жир, протеин, клетчатка, морфологические признаки
1. Воловик В.Т., Шпаков А.С. Производство рапса в Центральной России: состояние и перспективы // Кормопроизводство. – 2020. – № 10. – С. 3–9. – ISBN: 1562-0417.
2. Napier J.A., Haslam R.P., Beaudoin F., Cahoon E.B. Understanding and manipulating plant lipid composition: metabolic engineering leads the way. Curr. Opin. Plant Biol. 2014; 19: 68–75.
3. Гаганов А.П., Зверкова З.Н., Осипян Б.А. Рапсовое масло в кормлении цыплят-бройлеров // Комбикорма. – 2020. – № 7–8. – С. 42–44.
4. Гаганов А.П., Юртаева К.Е. Яровой рапс в комбикормах цыплят-бройлеров // Комбикорма. – 2018. – № 10. – С. 70–72.
5. Гаганов А.П., Зверкова З.Н., Юртаева К.Е. Выращивание цыплят-бройлеров на новых сортах ярового рапса // Животноводство и кормопроизводство. – 2018. – Т. 101, № 4. – С. 70–72.
6. Гаганов А.П., Зверкова З.Н., Осипян Б.А. Высокопротеиновый источник для бройлеров [Электронный ресурс] // Адаптивное кормопроизводство. – 2019. – № 3. – С. 36–47. – URL: http://www.adaptagro.ru.
7. Гаганов А.П., Зверкова З.Н. Влияние комбикормов, содержащих различные уровни рапсового жмыха, на эффективность их использования цыплятами-бройлерами // Животноводство и кормопроизводство. – 2019. – Т. 102, № 4. – С. 238–245.
8. Гаганов А.П., Зверкова З.Н., Харламов К.В. Рапсовый жмых в кормлении цыплят-бройлеров // Российская сельскохозяйственная наука. – 2020. – № 3. – С. 49–52.
9. Hossain S., Kadkol G.P., Raman R., Salisbury P.A., Raman H. Breeding Brassica napus for shatter resistance. World's largest Science, Technology & Medicine Open Access book publisher, 2012. DOI:https://doi.org/10.5772/29051. Downloaded from: http://www.intechopen.com/books/plant-breeding.
10. Channaoui S., Labhilili M., Mazouz H., Mohamed El.F., Nabloussi A. Assessment of novel EMS-induced genetic variability in rapeseed (Brassica napus L.) and selection of promising mutants. Pakistan Journal of Botany. 2019. 51. DOI:https://doi.org/10.30848/PJB2019-5(15).
11. Lakhssassi N., Colantonio V., Flowers N.D. et al. Stearoyl-Acyl Carrier Protein Desaturase Mutations Uncover an Impact of Stearic Acid in Leaf and Nodule Structure. Plant Physiol. 2017 Jul;174(3):1531–1543.
12. Capilla-Perez L., Victor Solier, Virginie Portemer et al. The HEM Lines: A New Library of Homozygous Arabidopsis thaliana EMS Mutants and its Potential to Detect Meiotic Phenotypes. Front Plant Sci. 2018; 9:1339.
13. Fikere Mulusew Barbulescu, Denise Maria, Malmberg, M. Michelle et al. Genomic prediction and genetic correlation of agronomic, blackleg disease and seed quality traits in canola (Brassica napus L.). (2019). International Plant and Animal Genome Conference, San Diego, USA (12–16 January 2019. USA.)
14. Эффективность химических мутагенов в селекции : сборник статей / Отв. ред.: И.А. Рапопорт, Т.В. Сальникова; Ин-т химической физики АН СССР. – М. : Наука, 1976. – 351с.
15. Зоз Н.Н. Методика использования химических мутагенов в селекции сельскохозяйственных культур // Мутационная селекция : сборник статей. – М. : Наука, 1968. – С. 217–230.
16. Толмачева Е.В., Новоселов М.Ю. Применение метода химического мутагенеза для создания нового исходного материала лядвенца рогатого (Lotus corniculatus L.) // Методы и технологии в селекции растений и растениеводстве. Школа молодых ученых по эколого-генетическим основам Северного растениеводства в рамках Международной научно-практической конференции (Киров, 02–03 апреля 2015 года). – Киров, 2015. – С. 238–241.
17. Новоселов М.Ю. Метод химического мутагенеза в селекции клевера лугового // Методические указания по селекции и первичному семеноводству клевера. Ред.: З.Ш. Шамсутдинов, А.С. Новоселова, С.А. Бекузарова. – Москва, 2002. – С. 25–28.
18. Новоселов М.Ю. Особенности отбора и сохранения мутантных форм клевера лугового // Методические указания по селекции и первичному семеноводству клевера. Ред.: З.Ш. Шамсутдинов, А.С. Новоселова, С.А. Бекузарова. – Москва, 2002. – С. 28–29.
19. Amosova A.V., Zoshchuk S.A., Volovik V.T., Shirokova A.V., Horuzhiy N.E., Mozgova G.V., Yurkevich O.Yu., Artyukhova M.A., Lemesh V.A., Samatadze T.E., Muravenko O.V. Phenotypic, biochemical and genomic variability in generations of the rapeseed (Brassica napus L.) mutant lines obtained via chemical mutagenesis. PLOS ONE, 2019, vol. 14, no. 8, pp. e0221699.
20. Shirokova A., Volovik V., Baranova E., Krutius O., Sergeeva S., Korovina L., Muravenko O. The relationship of color and seed coat thickness with the content of fiber, fat and protein in the seeds of mutant lines of canola. Book of abstracts 15th International Rapeseed Congress (Berlin, June 16–19, 2019). Berlin, 2019, pp. 287.
21. Исторические аспекты, состояние и перспективы развития семеноводства кормовых трав в России / В.Н. Золотарев, О.В. Трухан, П.И. Комахин, Т.В. Козлова // Кормопроизводство. – 2022. – № 7. – С. 3–9. – DOI:https://doi.org/10.25685/KRM.2022.7.2022.008.
22. Золотарев В.Н. Продуктивность семенных травостоев многолетних видов мятликовых трав на почвах разного уровня плодородия // Кормопроизводство. – 2022. – № 7. – С. 15–19. – EDN: https://elibrary.ru/XELUQW.
23. Sharafi Y., Majidi M.M., Goli S.H., Rashidi F. Oil content and fatty acids composition in Brassica species. Int. J. Food Prop. 2015; 18: 2145–2154.
24. Вся правда об Омега-9 (олеиновая кислота) [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://lifegid.com/bok/1636-vsya-pravda-o-omega-9-oleinovaya-kislota.html (дата обращения 02.01.2024).
25. Сравнение жирнокислотного состава различных пищевых масел / В.Т. Воловик, Т.В. Леонидова, Л.М. Коровина, Н.А. Блохина, Н.П. Касарина // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. – 2019. – № 5. – С. 147–152.
26. Омега-6 [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://foodandhealth.ru/komponenty-pitaniya/omega-6/ (дата обращения 03.01.2024).
27. Омега-3 полиненасыщенные жирные кислоты — это должен знать каждый [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://culturazdoroviya.ru/omega-3-polinenasyshchennye-zhirnye-kisloty.html (дата обращения 03.01.2024).
